Протокол клонального микроразмножения Humulus lupulus (Cannabaceae)

УДК 582.635.38:581.143.6+57.085.2

Ключевые слова: адаптация, генотип, культура in vitro, микроразмножение, посадочный материал, регуляторы роста растений, укоренение, хмель, эксплант

Аннотация

Хмель является перспективной сельскохозяйственной культурой, востребованной в пищевой, фармацевтической и косметической промышленности. Решение проблемы массового получения посадочного материала для закладки промышленных плантаций и маточных насаждений возможно с использованием биотехнологических методов. В результате исследований разработан протокол клонального микроразмножения Humulus lupulus, включающий все этапы от подготовки маточных растений и введения в культуру in vitro до адаптации к нестерильным условиям. Протокол протестирован на 13 сортовых и дикорастущих генотипах. Впервые получена хорошо растущая асептическая культура отечественных сортов. Подтверждена зависимость эффективности размножения от генотипа и количества пассажей. Подобраны условия, обеспечивающие высокий темп размножения культуры хмеля in vitro, начиная с IV пассажа. Установлено, что максимальное число регенерировавших микрочеренков можно получить на 24–26 сутки культивирования первичного экспланта на питательной среде МС, дополненной 2 мг/л БАП и 1 мг/л ГК3. Впервые показана, возможность совмещения этапов укоренения и микроразмножения на среде МС, содержащей 0,5 мг/л ИМК. Это, при наличии биотехнологической коллекции H. lupulus, сокращает процесс клонирования до одного пассажа. Для перехода на этап адаптации достаточно формирования на побеге двух узлов и хорошо развитой корневой системы. Приём двухэтапной адаптации к нестерильным условиям выращивания с применением гидропоники обеспечивает приживаемость растений до 100 %. Разработанный протокол клонального микроразмножения хмеля может быть использован для тиражирования ценных генотипов в научных, селекционных и производственных целях.

Скачивания

Данные скачивания пока недоступны.

Литература

Adams A. N. 1975. Elimination of viruses from the hop (Humulus lupulus) by heat and meristem culture. J. Hort. Sci. 50: 151–160.
Афанасьева О. Г., Иванов Е. А., Макушев А. Е. Исследование мировой торговли хмелем и определение места России в товарообороте продукции // Аграрный вестник Урала. Спецвыпуск «Экономика», 2022. С. 2‒17. DOI: 10.32417/1997-4868-2022-228-13-2-17
Astray G., Gullón P., Gullón B., Munekata P., Lorenzo J. 2020. Humulus lupulus L. as a natural source of functional biomolecules. Appl. Sci. 10: 5074. DOI: 10.3390/app10155074
Aubakirova G., Moldahmetova Z., Tleubayeva Z. 2024. Technology for production of bakery products using hop yeast. The Journal of Almaty Technological University 145: 48–58. DOI: 10.48184/2304-568X-2024-3-48-58
Batista D., Ascensao L., Sousa M. J., Pais M. S. 2000. Adventitious shoot mass production of hop (Humulus lupulus L.) var. Eroica in liquid medium from organogenic nodule cultures. Plant Sci. 151(1): 47–57. DOI: 10.1016/S0168-9452(99)00196-X
Batista D., Sousa M. J., Pais M. S. 1996. Plant regeneration from shoot and petiole-derived callus of Humulus lupulus L. (hop) clone Braganfa and var. Brewer'’s Gold. In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant 32: 37–41. DOI: 10.1007/BF02823011
Becker L., Boyer I., Bergfeld W., Belsito D., Hill R., Klaassen C., Liebler D., Marks J., Shank R., Slaga Th., Snyder P., Fiume M., Heldreth B. 2023. Safety assessment of hops as used in cosmetics. Int. J. Toxicol. 43(1_suppl): 5S-29S. DOI: 10.1177/10915818231221796
Bouback T. A., Aljohani A. M., Albeshri A., Al-Talhi H., Moatasim Y., GabAllah M., Ali M. A. 2023. Antiviral activity of Humulus lupulus (hop) aqueous extract against MERS-CoV and SARS-CoV-2: in-vitro and in-silico study. Biotechnology & Biotechnological Equipment 37(1): 167–179. DOI: 10.1080/13102818.2022.2158133
Бычкова О. В., Мироненко О. Н., Небылица А. В., Желонкина Ю. Р., Мякишева Е. П. Адаптации регенерантов Humulus lupulus L. к условиям ex vitro // Вестник КрасГАУ, 2024. № 5. С. 27–33. DOI: 10.36718/1819-4036-2024-5-27-33
Chaplygina I. A., Batura N. G., Matyushev V. V., Tipsina N. N., Shmeleva Zh. N. 2020. The hop sourdough use to improve bread microbiological safety. IOP Conf. Ser.: Earth Environ. Sci. 421: 032030. DOI: 10.1088/1755-1315/421/3/032030
Данилова Ю. С. Каштанова О. А., Трейвас Л. Ю. Основные вредные организмы на хмеле обыкновенном в Чувашии // Защита и карантин растений, 2013. № 9. С. 46–48.
Gargani E., Ferretti L., Faggioli F. 2017. A survey on pests and diseases of Italian hop crops. Italus Hortus 24(2): 1–17. DOI: 10.26353/j.itahort/2017.2.117
Гашенко О. А., Кастрицкая М. С., Кухарчик Н. В. Микроразмножение сортов хмеля в культуре in vitro // Субтропическое и декоративное садоводство, 2019. № 68. С. 111–118. DOI: 10.31360/2225-3068-2019-68-111-118
Harish V., Haque E., ´Smiech M., Taniguchi H., Jamieson S., Tewari D., Bishayee A. 2021. Xanthohumol for human malignancies: Chemistry, pharmacokinetics and molecular targets. Int. J. Mol. Sci. 22: 4478. DOI: 10.3390/ijms22094478
Iacuzzi N., Salamone F., Farruggia D., Tortorici N., Vultaggio L., Tuttolomondo T. 2023. Development of a new micropropagation protocol and transfer of in vitro plants to in vivo conditions for Cascade hop. Plants (Basel) 12(15): 2877. DOI: 10.3390/plants12152877
Кастрицкая М. С., Кухарчик Н. В., Гашенко О. А. Микроразмножение сортов хмеля in vitro // Изв. Нац. акад. наук Белар. Сер. аграр. наук, 2014. № 2. С. 75–80.
Khlynovskiy M. D., Mironenko O. N., Khlebova L. P., Bychkova O. V., Brovko E. S., Nebylitsa A. V. 2023. Actual issues of hop growing in Russia. Proceedings of the Scientific-Technical Commission of the International Hop Growers’ Convention, 25–29 June 2023, Ljubljana, Slovenia. Wolnsach: Druckhaus Kastner AG. Pp. 85–89. https://www.hopfenforschung.de/wp-content/uploads/2023/07/Proceedings_STC_2023.pdf
Korpelainen H., Pietiläinen M. 2021. Hop (Humulus lupulus L.): Traditional and present use, and future potential. Econ. Bot. 75(4): 302–322. DOI: 10.1007/s12231-021-09528-1
Кухарчик Н. Получение посадочного материала плодовых и ягодных растений in vitro // Наука и инновации, 2019. № 6(196). С. 17–21.
Lagos F. S., Zuffellato-Ribas K.C., Deschamps C. 2022. Vegetative propagation of hops (Humulus lupulus L.): Historical approach and perspectives. Semina: Ciênc. Agrár. Londrina 43(3): 1373–1394. DOI: 10.5433/1679-0359.2022v43n3p1373
Liberatore C. M., Rodolfi M., Beghè D., Fabbri A., Ganino T., Chiancone B. 2020. Adventitious shoot organogenesis and encapsulation technology in hop (Humulus lupulus L.). Sci. Hort. 270(1): 109416. DOI: 10.1016/j.scienta.2020.109416
Machado M. P., Gomes E. N., Francisco F., Bernert A. F., Filho J. C. B., Deschamps C. 2018. Micropropagation and establishment of Humulus lupulus L. plantlets under field conditions at Southern Brazil. J. Agric. Sci. 10(7): 275–281. DOI: 10.5539/jas. v10n7p275
Mafakheri M., Hamidoghli Y. 2019. Micropropagation of hop (Humulus lupulus L.) via shoot tip and node culture. Acta Horticulturae 1236: 31–36. DOI: 10.17660/ActaHortic.2019.1236.5
Милоста Г. М., Лапа В. В. Агробиологические основы выращивания хмеля в Республике Беларусь. Гродно: ГГАУ. 286 с.
Mironenko O., Poltaratskaya J., Nebylitsa A., Bychkova O., Myakisheva E., Silantyeva M. 2024. Humulus lupulus L. of Western Siberia and Altai Mountain Country. Version 1.1. Altai State University. Occurrence dataset https://doi.org/10.15468/qupv9w accessed via GBIF.org on 2024-12-06. URL: https://www.gbif.org/dataset/162b952d-abed-43aa-b05e-19f95670272d
Митрофанова И. В. Соматический эмбриогенез и органогенез как основа биотехнологии получения и сохранения многолетних садовых культур. Киев: Аграрна наука, 2011. 344 с.
Митрофанова И. В., Иванова Н. Н., Жданова И. В. Депонирование in vitro декоративных, ароматических и плодовых растений // Основы создания генобанка in vitro видов, сортов и форм декоративных, ароматических и плодовых культур. Под ред. И. В. Митрофановой. Симферополь: Изд-во Типография «Ариал», 2018. С. 171–256.
Мякишева Е. П., Бычкова О. В., Мироненко О. Н. Новые элементы оценки морфогенеза регенерантов хмеля in vitro // Аграрный научный журнал, 2024. № 5. С. 40–46. DOI: 10.28983/asj.y2024i5pp40-46
Panis B., Nagel M., den Houwe I. V. 2020. Challenges and prospects for the conservation of crop genetic resources in field genebanks, in in vitro collections and / or in liquid nitrogen. Plants 9(12): 1634. DOI: 10.3390/plants9121634
Patzak J. 2003. Assessment of somaclonal variability in hop (Humulus lupulus L.) in vitro meristem cultures and clones by molecular methods. Euphytica 131(3): 343–350. DOI: 10.1023/A:1024096401424
Pereira O., Santos G., Sousa M. 2022. Hop by-products: pharmacological activities and potential application as cosmetics. Cosmetics 9: 139. DOI: 10.3390/cosmetics9060139
Pethybridge S. J., Hay F. S., Barbara D. J., Eastwell K. C., Wilson C. R. 2008. Viruses and viroids infecting hop: significance, epidemiology, and management. Plant Dis. 92(3): 324–338. DOI: 10.1094/PDIS-92-3-0324
Попов В. И., Высоцкий В. А., Туктагулов И. М. Условия культивирования изолированных апексов хмеля для клонального микроразмножения // Физиология растений, 1985. Т. 32, № 6. C. 1191–1195.
Rosa R. S., Lannes S. C. S. 2024. Hop extracts and their utilizations: perspectives based on the last 10 years of research. Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences 60: e23905. DOI: 10.1590/s2175-97902024e23905
Roy A. T., Leggett G., Koutoulis A. 2001. Development of a shoot multiplication system for hop Humulus lupulus L. In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant 37(1): 79–83. DOI: 10.1007/s11627-001-0015-0
Sastry K. S., Mandal B., Hammond J., Scott S. W., Briddon R. W. 2019. Encyclopedia of plant viruses and viroids. New Delhi, India: Springer Nature India Private Limited. 2946 pp. DOI: 10.1007/978-81-322-3912-3
Škof S., Bohanec B., Kastelec D., Luthar Z. 2007. Spontaneous induction of tetraploidy in hop using adventitious shoot regeneration method. Plant Breed. 126(4): 416–421. DOI: 10.1111/j.1439-0523.2007.01378.x
Svoboda P. 1992. Culture isolated from shoot apex of hop (Humulus lupulus L.) in vitro. Rostl. Výr. 38: 523–528.
Tyagi R. K., Grawal A. A. 2015. Revised genebank standards for management of plant genetic resources. Indian J. Agric. Sci. 85(2): 157–165. DOI: 10.56093/ijas.v85i2.46437
The Second Report on the State of the World’s Plant Genetic Resources for Food and Agriculture. 2010. In: FAO. Rome. URL: https://www.fao.org/4/i1500e/i1500e.pdf (Accessed 25 November 2024).
Опубликован
2024-12-28
Как цитировать
Мироненко О. Н., Бычкова О. В., Мякишева Е. П., Хлебова Л. П., Небылица А. В., Бровко Е. С., Полтарацкая Ю. Р. Протокол клонального микроразмножения Humulus lupulus (Cannabaceae) // Turczaninowia, 2024. Т. 27, № 4. С. 130–140 DOI: 10.14258/turczaninowia.27.4.15. URL: https://turczaninowia.asu.ru/article/view/16652.
Раздел
Научные статьи