Первая находка Bacillicladium lobatum (Chaetothyriales) на Кавказе (вторая находка в мире)

УДК 582.282:581.95(479-924.73)

  • Ирина Юрьевна Кирцидели Ботанический институт им. В. Л. Комарова РАН https://orcid.org/0000-0002-7232-996X Email: microfungi@mail.ru
  • Вадим Александрович Ильюшин Ботанический институт им. В. Л. Комарова РАН https://orcid.org/0000-0003-1031-7661 Email: ilva94@yandex.ru
  • Дмитрий Юрьевич Власов Санкт-Петербургский государственный университет http://orcid.org/0000-0002-0455-1462 Email: dmitry.vlasov@mail.ru
  • Елена Петровна Баранцевич Северо-Западный федеральный медицинский исследовательский центр им. В. А. Алмазова Министерства здравоохранения Российской Федерации http://orcid.org/0000-0002-4800-3345 Email: lenabara2003@inbox.ru
Ключевые слова: горы Кавказа, криокониты, микроскопические грибы, Bacillicladium, Chaetothyriales

Аннотация

Bacillicladium lobatum выделен из криоконитов гор Кавказа и представлен штаммом CZ-25. Исследовали макро- и микроморфологию изолята, а также частичные последовательности внутреннего транскрибируемого спейсерного участка рДНК (ITS1-5.8S-ITS2). Изолят Bacillicladium lobatum CZ-25 имел ряд особенностей, которые отличали его от штамма Bacillicladium lobatum из биопленки образований, покрывающих голые гранитные стены на станции метро KungstraÈdgården в Стокгольме. Штамм c Кавказа имел более крупные конидии и широкие гифы, его максимальная температура роста была выше. В результате наших исследований мы впервые обнаружили микрогрибы Bacillicladium lobatum в горах Кавказа. Наше исследование показывает, что Bacillicladium lobatum является видом, встречающимся в городах Северной Европы и в горах Кавказа.

Скачивания

Данные скачивания пока недоступны.

Metrics

Загрузка метрик ...

Литература

Acharya T., Hare J. 2022. Sabouraud agar and other fungal growth media. In: V. K. Gupta, M. Tuohy (eds.). Laboratory Protocols in Fungal Biology. Fungal Biology. Cham: Springer. Pp. 69–86. DOI: 10.1007/978-3-030-83749-5_2
Bagshaw E. A., Tranter M., Wadham J. L., Fountain A. G., Dubnick A., Fitzsimons S. 2016. Processes controlling carbon cycling in Antarctic glacier surface ecosystems. Geochem. Perspect. Lett. 2: 44–54. DOI: 10.7185/geochemlet.1605
Bardgett R. D., Richter A., Bol R., Garnett M. H., Baumler R., Xu X. L., LopezCapel E., Manning D. A. C., Hobbs P. J., Hartley I. R., Wanek W. 2007. Heterotrophic microbial communities use ancient carbon following glacial retreat. Biol. Lett. 5: 487–490.
Belozerov E., Rets E., Popovnin V. 2020. Mathematical simulation of melting mountain glaciers, EGU General Assembly. EGU2020-10440. DOI: 10.5194/egusphere-egu2020-10440
Ciccazzo S., Esposito A., Borruso L., Brusetti L. 2016. Microbial communities and primary succession in high altitude mountain environments. Ann. Microbiol. 66: 43–60. DOI: 10.1007/s13213-015-1130-1
Crous P. W., Schumacher R. K., Akulov A., Thangavel R., Hernández-Restrepo M., Carnegie A. J., Cheewangkoon R., Wingfield M. J., Summerell B. A., Quaedvlieg W., Coutinho T. A., Roux J., Wood A. R., Giraldo1 A., Groenewald J. Z. 2019. New and Interesting Fungi. 2 Fungal Systematics and Evolution 3: 57–134. DOI: 10.3114/fuse.2019.03.06
Darcy J. L., Schmidt S. K. 2016. Nutrient limitation of microbial phototrophson a debris-covered glacier. Soil. Biol. Biochem. 95: 156–63.
GenBank database (NCBI) by using BLAST instrument. URL: http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi (Accessed 08 May 2023).
Goldman E., Green L. H. 2015. Practical Handbook of Microbiology. 3rd Edition. Boca Raton, USA: CRCPress. 1055 pp.
Gueidan C., Ruibal C., de Hoog G. S., Gorbushina A. A., Untereiner W. A., Lutzoni F. 2008. A rock-inhabiting ancestor for mutualistic and pathogen-rich fungal lineages. Stud. Mycol. 61: 111–119. DOI: 10.3114/sim.2008.61.11 PMID: 19287533
Hodson A., Anesio A. M., Tranter M., Fountain A., Osborn M., Priscu J. 2008. Glacial ecosystems. Ecol. Monogr. 78: 41–67. DOI: 10.1890/07-0187.1
Index Fungorum [2023]. URL: http://www.indexfungorum.org (Accessed 08 May 2023).
Kelly K. L. 1964. Inter-Society Color Council – National Bureau of Standards Color Name Charts Illustrated with Centroid Color. Washington, DC: US Government Printing Office. 22 pp.
Nemergut D. R., Anderson S. P., Cleveland C. C., Martin A. P., Miller A. E., Seimon A., Schmidt S. K. 2007. Microbial community succession in an unvegetated recently deglaciated soil. Microb Ecol 53: 110–122.
Nicol G. W., Tscherko D., Embley T. M., Prosser J. I. 2005. Primary succession of soil crenarchaeota across a receding glacier foreland. Environ. Microbiol. 7: 337–347.
Novakova A., Hubka V., Sailz-Jimenez C., Kolarik M. 2012. Aspergillus baeticus sp. nov. and Aspergillus thesauricus sp. nov.: Two new species in section Usti originating from Spanish caves. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology 62: 2778– 2785. DOI: 10.1099/ijs.0.041004-0
Poniecka E. A., Bagshaw E. A., Tranter M., Sass H., Williamson C. J., Anesio A. M. 2018. Rapid development of anoxic niches in supraglacial ecosystems. Arctic, Antarct. Alp. Res. 50: S100015. DOI: 10.1080/15230430.2017.1420859
Porazinska D. L., Fountain A. G., Nylen T. H., Tranter R. M., Virginia A., Wall D. H. 2004. The biodiversity and biogeochemistry of Cryoconite holes from McMurdo dry valley glaciers, Antarctica. Arctic, Antarct. Alp. Res. 36(1): 84–91.
Raper K. B., Thom C. 1949. A manual of the Penicillia. Baltimore: The Williams & Wilkins Company. 878 pp.
ReÂblova Â. M., Hubka V., Thureborn O., Lundberg J., Sallstedt T., Wedin M. 2016. From the Tunnels into the Treetops: New Lineages of Black Yeasts from Biofilm in the Stockholm Metro System and Their Relatives among Ant-Associated Fungi in the Chaetothyriales. PLoS ONE 11(10): e0163396. DOI: 10.1371/journal.pone.0163396
Ruibal C., Platas G., Bills G. F. 2008. High diversity and morphological convergence among melanised fungi from rock formations in the Central Mountain System of Spain. Persoonia 21: 93–110. DOI: 10.3767/003158508X371379 PMID: 20396580
Samson R. A., Houbraken J., Thrane U., Frisvad J. C., Andersen B. 2010. Food and Indoor Fungi [CBS Laboratory Manual series no. 2.], Utrecht: CBS-KNAW. Fungal Biodiversity Centre. 390 pp.
Samson R. A., Visagie C., Houbraken J., Hong S. -B., Hubka V., Klaassen C. H. W., Perrone G., Seiffert K. A., Susca A., Tanney J. B., Varga J., Kocsube S., Szigeti G., Yaguchi T., Frisvard J. C. 2014. Phylogeny, identification and nomenclature of the genus Aspergillus. Studies in Mycology 78: 141–173. DOI: 10.1016/j.simyco.2014.07.004
Scher C., Steiner N. C., Kyle C., McDonald. 2020. Mapping seasonal glacier melt across the Hindu Kush Himalaya with time series SAR. The cryosphere 15: 4465–4482. DOI: 10.5194/tc-2020-181
Schmidt S. K., Naff C. S., Lynch R. C. 2012. Fungal communities at the edge: ecological lesson from high alpine fungi. Fungal. Ecol. 5: 443–452.
Schmidt S. K., Reed S. C., Nemergut D. R., Grandy A. S., Cleveland C. C., Weintraub M. N., Hill A. W., Costello E. K., Meyer A. F., Neff J. C., Martin A. M. 2008. The earliest stages of ecosystem succession in high elevation (5000 meters above sea level) recently deglaciated soils. Proc. R. Soc. B. 275: 2793–2802.
Selbmann L., de Hoog G. S., Mazzaglia A., Friedmann E. I., Onofri S. 2005. Fungi at the edge of life: cryptoendolithic black fungi from Antarctic desert. Stud. Mycol. 51: 1–32.
Sigler W. V., Crivii S., Zeyer J. 2002. Bacterial succession in glacial forefield soils characterized by community structure activity and opportunistic growth dynamics. Microb. Ecol. 44: 306–316.
Sigler W. V., Zeyer J. 2002. Microbial diversity and activity along the forefields of two receding glaciers. Microb. Ecol. 45: 397–407.
Sigler W. V., Zeyer J. 2004. Colony-forming analysis of bacterial community succession in deglaciated soils indicates pioneer stress-tolerant opportunists. Microb. Ecol. 48: 316–323.
Sterflinger K., Krumbein W. E. 1995. Multiple stress factors affecting growth of rock inhabiting black fungi. Bot. Acta 108: 467–538.
Takeuchi O., Sakaki A., Uetake J., Nagatsuka N., Shimada R., Niwano M., Aoki T. 2018. Temporal variations of cryoconite holes and cryoconite coverage on the ablation ice surface of Qaanaaq Glacier innorthwest Greenland. Annals of Glaciology 59(77): 1–10. DOI: 10.1017/aog.2018.19
White T. J., Bruns T., Lee S., Taylor J. 1990. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: M. Innis, D. Gelfand, J. Sninsky, T. White (eds.). PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications. San Diego, California: Academic Press. Pp. 315–322.
Zawierucha K., Ostrowska M., Kolicka M. 2017. Applicability of cryoconite consortia of microorganisms and glacier-dwelling animals in astrobiological studies. Contemp. Trends. Geosci. 6(1): 1–10. DOI: 10.1515/ctg-2017-0001
Опубликован
2023-07-01
Как цитировать
Кирцидели И. Ю., Ильюшин В. А., Власов Д. Ю., Баранцевич Е. П. Первая находка Bacillicladium lobatum (Chaetothyriales) на Кавказе (вторая находка в мире) // Turczaninowia, 2023. Т. 26, № 2. С. 88-93 DOI: 10.14258/turczaninowia.26.2.6. URL: http://turczaninowia.asu.ru/article/view/13436.
Раздел
Научные статьи