Редкие и эндемичные виды растений флоры Горного Крыма: морфогенетический ответ на сохранение в генбанке in vitro

  • Наталия Николаевна Иванова Ордена Трудового Красного Знамени Никитский ботанический сад – Национальный научный центр РАН Email: nnivanova2017@yandex.ru
  • Валентина Анатольевна Цюпка Ордена Трудового Красного Знамени Никитский ботанический сад – Национальный научный центр РАН Email: nnivanova2017@yandex.ru
  • Ольга Владимировна Митрофанова Ордена Трудового Красного Знамени Никитский ботанический сад – Национальный научный центр РАН Email: nnivanova2017@yandex.ru
  • Ирина Вячеславовна Митрофанова Главный ботанический сад им. Н. В. Цицина РАН Email: nnivanova2017@yandex.ru
Ключевые слова: депонирование, осмотик, редкий эндемик, ретардант, эксплант, in vitro

Аннотация

Биотехнологические подходы активно применяются в последние годы для сохранения в условиях замедленного роста редких и эндемичных видов растений. Это достигается путем снижения температуры, интенсивности освещения, повышением концентрации осмотиков, введения в состав питательной среды ретардантов. Для депонирования использовали сегменты микропобегов Lamium glaberrimum (K. Koch) Taliev(Lamiaceae), Crepis purpurea L. (Asteraceae), Scrophularia exilis Popl. (Scrophulariaceae), Silene jailensis N. I. Rubtzov (Caryophyllaceae), культивируемых в стандартных условиях in vitro в течение 8–10 месяцев. Экспланты помещали на питательную среду ¼ МС, дополненную ингибиторами роста: 0,2 г/л хлорхолинхлорида ССС и 60 г/л сахарозы. При депонировании температура составила 4–6 ºС, интенсивность освещения 1,25–3,75 мкМ м-2 с-1, фотопериод 16 часов. Проведенный скрининг морфометрических показателей показал высокую жизнеспособность и снижение кинетики роста в течение 12 и 24 месяцев депонирования в генбанке in vitro. Наряду с замедленным ростом микропобега наблюдали образование дополнительных побегов, листьев и корней.

Скачивания

Данные скачивания пока недоступны.

Metrics

Загрузка метрик ...

Литература

Bell R. L., Reed B. M. 2002. In vitro tissue culture of pear: Advances in techniques for micropropagation and germplasm preservation. Proc. 8th IS on Pear.: 412–418. DOI: 10.17660/ActaHortic.2002.596.66
Cruz–Cruz C. A., González–Arnao M. T., Engelmann F. 2013. Biotechnology and Conservation of Plant Biodiversity. Resources 2: 73–95. DOI: 10.3390/resources2020073
Engelmann F. 2011. Use of biotechnologies for the conservation of plant biodiversity. In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant 47: 5–16. DOI: 10.1007/s11627-010-9327-2
Engelmann F. 2013. Biotechnology and conservation of plant biodiversity. Resources 2: 73–95. DOI: 10.3390/resources2020073
Основы создания генбанка in vitro видов, сортов и форм декоративных, ароматических и плодовых культур: коллективная монография. Под ред. д. б. н. И. В. Митрофановой. Симферополь: ИТ «АРИАЛ», 2018. 260 с.
Gianni S., Sottile F. 2015. In vitro storage of plum germplasm by slow growth. Hort. Sci. 42: 61–69. DOI: 10.17221/186/2014-HORTSCI.
Kovalchuk I., Lyudvikova Y., Volgina V., Reed B. 2009. Medium, vessels and genotype all influence in vitro cold storage apple germplasm. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 96, 2: 127–136. DOI: 10.1007/s11240-008-9468-8
Никифоров А. Р. Биологические и морфологические особенности некоторых облигатных гляреофитов Горного Крыма // Бот. журн., 2018. Т. 103, № 8. С. 968–980.
Никифоров А. Р., Никифорова А. А. Ритмологические различия в развитии растений Lagoseris callicephala и Lagoseris purpurea (Asteraceae) // Бюллетень ГНБС, 2016. Вып. 118. С. 58–63.
Новикова Т. И. Использование биотехнологических подходов для сохранения биоразнообразия растений // Растительный мир Азиатской России, 2013. № 2(12). С. 119–128.
Mitrofanova I. V., Lesnikova-Sedoshenko N. P., Brailko V. A., Chelombit S. V., Zhdanov, I. V., Mitrofanova O. V. 2020. Biotechnological methods of propagation for some rare endemic plant species of the southern Russian flora. Acta Hortic 1285: 177–184. DOI: 10.17660/ActaHortic.2020.1285.28
Molkanova O., Egorova D., Mitrofanova I. 2018. Preservation сharacteristics of valuable plant cpecies in in vitro genebanks at russian botanical gardens. In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant 4, 1: S46. DOI: 10.1007/s11627-018-9921-2
Murashige T., Skoog F. 1962. А revised medium for rapid growth and bioassays with Tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15, 3: 473–497. DOI: 10.1111/ j.1399-3054.1962.tb08052.x
Красная книга Российской Федерации (растения и грибы) / Гл. редколл.: Ю. П. Трутнев и др.; cост. Р. В. Камелин и др. М.: Тов-во науч. изд. КМК, 2008. 885 с.
Rajasekharan P. E., Sahijram L. 2015. In vitro conservation of plant germplasm. In: Plant Biology and Biotechnology. Volume II: Plant Genomics and Biotechnology. B. Bahadur, M. Venkat Rajam, L. Sahijram, K. Krishnamurthy (eds). Nev Delhi: Springer. Pp. 417–443. DOI: 10.1007/978-81-322-2283-5_22
Красная книга Республики Крым. Растения, водоросли и грибы. Отв. ред. А. В. Ена, А. В. Фатерыга. Симферополь: ООО «ИТ «АРИАЛ», 2015. 480 с.
Reed B. M., DeNoma J. 2016. Medium-term in vitro storage of pear as a complementary germplasm preservation technique. Acta Hortic 1113: 251–256. DOI: 10.17660/ActaHortic.2016.1113.37
Sarasan V., Cripps R., Ramsay M. M., Atherton C., McMichen M., Prendergast G., Rowntree J. K. 2006. Conservation in vitro of threatened plants – progress in the past decade. In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant 42: 206–214. DOI: 10.1079/IVP2006769
Whitlock R., Hipperson H., Thompson D. B. A., R. K. Butlin R. K., Burke T. 2016. Consequences of in-situ strategies for the conservation of plant genetic diversity. Biological Conservation 203: 134–142. DOI: 10.1016/j.biocon.2016.08.006
Опубликован
2022-03-30
Как цитировать
Иванова Н. Н., Цюпка В. А., Митрофанова О. В., Митрофанова И. В. Редкие и эндемичные виды растений флоры Горного Крыма: морфогенетический ответ на сохранение в генбанке in vitro // Turczaninowia, 2022. Т. 25, № 1. С. 24-30 DOI: 10.14258/turczaninowia.25.1.3. URL: http://turczaninowia.asu.ru/article/view/11191.
Раздел
Научные статьи