Внутригеномный полиморфизм внутренних транскрибируемых спейсеров 35S рДНК (ITS) у трёх видов и трёх межвидовых гибридов Pulsatilla (Ranunculaceae)

УДК 582.675.1+575.174.015.3

  • Елизавета Ольгердовна Пунина Ботанический институт им. В. Л. Комарова РАН https://orcid.org/0000-0001-9745-4604 Email: elizaveta_punina@mail.ru
  • Юлия Владимировна Михайлова Ботанический институт им. В. Л. Комарова РАН https://orcid.org/0000-0001-9278-0937 Email: mjulka@gmail.com
  • Виктория Семёновна Шнеер Ботанический институт им. В. Л. Комарова РАН https://orcid.org/0000-0002-6122-6770 Email: shneyer@rambler.ru
  • Елена Евгеньевна Крапивская Ботанический институт им. В. Л. Комарова РАН https://orcid.org/0009-0009-5703-2840 Email: krapivskaja@rambler.ru
  • Эдуард Модрисович Мачс† Email: edw.mach@gmail.com
  • Александр Викентьевич Родионов Ботанический институт им. В. Л. Комарова РАН https://orcid.org/0000-0003-1146-1622 Email: avrodionov@mail.ru
Ключевые слова: межвидовая гибридизация, нотовиды, полиморфные сайты, секвенирование, ITS1

Аннотация

Морфологические критерии не всегда позволяют установить гибридное происхождение образцов. Изучение внутригеномного полиморфизма генов, кодирующих белки или рРНК, позволяет дать более точную оценку. В качестве одного из таких маркеров часто используют участки ITS-районов 35S рДНК. В представленной работе мы провели сравнительный анализ ITS1 у трёх гибридов (нотовидов) из рода Pulsatilla: P. × intermedia, P. × spuria и P. × hackelii и их родительских видов P. patens, P. vernalis, P. pratensis, все из Ленинградской области (Россия). Регион ITS1-5.8S рДНК-ITS2 был секвенирован по Сэнгеру. На хроматограммах последовательностей ITS родительских видов в среднем было выявлено от 1,7 (P. pratensis) до 3,3 (P. vernalis) полиморфных сайта (PS) – позиции, где были обнаружены два разных нуклеотида. Все три изученных нотовида показали больше PS – от 4,7 (P. × intermedia) до 9,5 (P. × hackeli). Изучение внутригеномного полиморфизма транскрибируемого спейсера ITS1 методом локус-специфического NGS подтвердило очевидное предположение о том, что полиморфные сайты, выявляемые при секвенировании по Сэнгеру, на самом деле отражают наличие в геномах различных вариантов рДНК (риботипов), которые были получены растением от своих предков, если доля необычного риботипа составляет около 20 % и более. Более редкие варианты риботипа могут быть обнаружены только методом NGS. Среди основных риботипов (ZOTU) изученных нотовидов не обнаружено специфических ZOTU, которые не были обнаружены у родительских видов. Внутригеномный полиморфизм региона ITS1, выявленный с помощью секвенирования по Сэнгеру или NGS, у родительских видов может указывать на более ранние акты гомоплоидной гибридизации, сопровождающие видообразование внутри рода Pulsatilla.

Скачивания

Данные скачивания пока недоступны.

Metrics

Загрузка метрик ...

Литература

Aichele D., Schwegler H. W. 1957. Die Taxonomie der Gattung Pulsatilla. Feddes Repert. 60: 1–230.
Andreasen K., Baldwin B. G. 2003. Nuclear ribosomal DNA sequence polymorphism and hybridization in checker mallows (Sidalcea, Malvaceae). Mol. Phylogenet. Evol. 29(3): 563–581.
Baumberger von H. 1971. Chromosomenzahlbestimmungen and Karyotypanelysen bei den Gattungen Anemone, Hepatica and Pulsatilla. Ber. Schweiz. Bot. Ges. 80: 17–95.
Bolger A. M., Lohse M., Usadel B. 2014. Trimmomatic: A flexible trimmer for Illumina sequence data. Bioinformatics 30(15): 2114–2120.
Chase M. W., Hills H. H. 1991. Silica gel: an ideal material for field preservation of leaf samples for DNA studies. Taxon 40(2): 215–220.
Dawe J. C., Murray D. F. 1979. In IOPB chromosome number reports LXIII. Taxon 28: 265–268.
Доронина А. Ю. Новые местонахождения редких видов сосудистых растений на Карельском перешейке (Ленинградская область и Санкт-Петербург) // Вестник СПбГУ. Серия 3. Биология, 2006. Т. 3. С. 34–40.
Edgar R. C. 2010. Search and clustering orders of magnitude faster than BLAST. Bioinformatics 26: 2460–2461. DOI: 10.1093/bioinformatics/btq461
Edgar R. C. 2013. UPARSE: Highly accurate OTU sequences from microbial amplicon reads. Nat. Methods 10: 996–998. DOI: 10.1038/nmeth.2604
Edgar R. C. 2016. UNOISE2: Improved error-correction for Illumina 16S and ITS amplicon reads. BioRxiv. DOI: 10.1101/081257
Feliner G. N., Rosselló J. A. 2007. Better the devil you know? Guidelines for insightful utilization of nrDNA ITS in species-level evolutionary studies in plants. Mol. Phylogenet. Evol. 44(2): 911–919.
Hegi G., Weber H. 1975. Illustrierte Flora von Mittel-Europa. Bd. 3. Teil 3. Berlin: P. Parey. 356 s. [In German].
Huson D. H., Bryant D. 2006. Application of phylogenetic networks in evolutionary studies. Mol. Biol. Evol. 2: 254–267.
Hyvärinen E., Juslen A., Kemppainen E., Uddström A., Liukko U.-M. 2019. Suomen lajien uhanalaisuus ß Punainen kirja. In: The 2019 red list of Finnish species. Helsiniki: Ympäristöministeriö & Suomen impäristökeskus. 704 pp.
Гельтман Д. В. Pulsatilla pratensis; Pulsatilla vernalis // Красная книга Российской Федерации (растения и грибы). М.: Тов-во науч. изд. КМК, 2008. С. 483–485.
Гельтман Д. В. Pulsatilla patens; P. pratensis; P. vernalis // Красная книга Ленинградской области. Объекты растительного мира. СПб.: Марафон, 2018. С. 229–230, 762–764.
Grant V. 1981. Plant speciation. New York; Columbia university press. 564 pp.
Карташова Н. Н., Малахова Л. А., Козлова А. А., Дуброва Н. А. Числа хромосом у ряда полезных растений из природных популяций флоры Приобья // Биология и биофизика: Материалы итоговой науч. конф. (по законченным в 1973 г. темам). Томск: Изд-во Том. ун-та, 1974. C. 47–53.
Kotseruba V., Pistrick K., Blattner F. R., Kumke K., Weiss O., Rutten T., Fuchs J., Endo T., Nasuda S., Ghukasyan A., Houben A. 2010. The evolution of the hexaploid grass Zingeria kochii (Mez) Tzvel. (2n = 12) was accompanied by complex hybridization and uniparental loss of ribosomal DNA. Mol. Phylogenet. Evol. 56(1): 146–155.
Kovarik A., Dadejova M., Lim Y. K., Chase M. W., Clarkson J. J., Knapp S., Leitch A. R. 2008. Evolution of rDNA in Nicotiana allopolyploids: a potential link between rDNA homogenization and epigenetics. Ann. Bot. 101(6): 815–823.
Красников А. А. 1991. Хромосомные числа некоторых видов сосудистых растений из Новосибирской области // Бот. журн., 1991. Т. 76, № 3. С. 476–479.
Krejová N. Hybridizace mezi Pulsatilla pratensis a P. patens? Skutenost nebo mýtus? Diplomová práce. Praha: Univerzita Karlova, Přírodovědecká fakulta, Katedra botaniky, 2014. 99 pp.
Kricsfalusy V. V. 2015. Taxonomy and phylogeny of Anemone patens L. sensu lato (Ranunculaceae): A critical review. Thaiszia J. Bot. 25: 153–164.
Kumar S., Stecher G., Li M., Knyaz C., Tamura K. 2018. MEGA X: Molecular Evolutionary Genetics Analysis across computing platforms. Mol. Biol. Evol. 35: 1547–1549.
Liu J. S., Schardl C. L. 1994. A conserved sequence in internal transcribed spacer 1 of plant nuclear rRNA genes. Plant Mol. Biol. 26(2): 775–778.
Lopez-Alvarez D., López-Herranz M. L., Betekhtin A., Catalán P. 2012. A DNA barcoding method to discriminate between the model plant Brachypodium distachyon and its close relatives B. stacei and B. hybridum (Poaceae). PLoS ONE 7(12): 51058.
Lunerová J., Renny-Byfield S., Matyášek R., Leitch A., Kovařík A. 2017. Concerted evolution rapidly eliminates sequence variation in rDNA coding regions but not in intergenic spacers in Nicotiana tabacum allotetraploid. Plant Syst. Evol. 303: 1043–1060.
Matyášek R., Renny-Byfiel S., Fulneče J., Maca J., Grandbastien M. A., Nichols R., Leitch A., Kovařík A. 2012. Next generation sequencing analysis reveals a relationship between rDNA unit diversity and locus number in Nicotiana diploids. BMC genomics 13(1): 1–12.
Noyes R. D. 2006. Intraspecific nuclear ribosomal DNA divergence and reticulation in sexual diploid Erigeron strigosus (Asteraceae). Amer. J. Bot. 93(3): 470–479.
Okonechnikov K., Golosova O., Fursov M., the UGENE team. 2012. Unipro UGENE: A unified bioinformatics toolkit. Bioinformatics 28: 1166–1167. DOI: 10.1093/bioinformatics/bts091
Пунина E. O., Гриф В. Г. Кариосистематическое исследование видов и естественных гибридов рода Pulsatilla (Ranunculaceae) в Ленинградской области // Бот. журн., 1984. Т. 69, № 12. С. 1673–1678.
Punina E. O., Machs E. M., Krapivskaya E. E., Kim E. S., Mordak E. V., Myakoshina Y. A., Rodionov A. V. 2012. Interspecific hybridization in the genus Paeonia (Paeoniaceae): polymorphic sites in transcribed spacers of the 45S rRNA genes as indicators of natural and artificial peony hybrids. Russ. J. Genet. 48(7): 684–697.
Punina E. O., Machs E. M., Krapivskaya E. E., Rodionov A. V. 2017. Polymorphic sites in transcribed spacers of 35S rRNA genes as an indicator of origin of the Paeonia cultivars. Russ. J. Genetics. 53(2): 202–212.
Qiu T., Liu Z., Liu B. 2020. The effects of hybridization and genome doubling in plant evolution via allopolyploidy. Mol Biol. Rep. 47: 5549–5558. DOI: 10.1007/s11033-020-05597-y
Ridgway K. P., Duck J. M., Young J. P. W. 2003. Identification of roots from grass swards using PCR-RFLP and FFLP of the plastid trnL (UAA) intron. BMC Ecol. 3: 3–8. DOI: 10.1186/1472-6785-3-8
Rodionov A. V., Dobryakova K. S., Punina E. O. 2018. Polymorphic sites in ITS1-5.8 S rDNA-ITS2 region in hybridogenic genus × Elyhordeum and putative interspecific hybrids Elymus (Poaceae: Triticeae). Russ. J. Genet. 54(9): 1025–1039.
Rodionov A. V., Gnutikov A. A., Kotsinyan A. R., Kotseruba V. V., Nosov N. N., Punina E. O., Rayko M. P., Tyupa N. B., Kim E. S. 2017. ITS1-5.8 S rDNA-ITS2 sequence in 35S rRNA genes as marker for reconstruction of phylogeny of grasses (Poaceae family). Biol. Bull. Rev. 7(2): 85–102.
Rodionov A. V., Machs E. M., Mikhailova Y. V., Krainova L. M., Loskutov I. G., Amosova A. V., Muravenko O. V., Gnutikov A. A. 2020. Phenomenon of multiple mutations in the 35S rRNA genes of the C subgenome of polyploid Avena L. Rus. J. Genet. 56: 657–666.
Ronikier M., Costa A., Aguilar J. F., Feliner G. N., Küpfer P., Mirek Z. 2008. Phylogeography of Pulsatilla vernalis (L.) Mill. (Ranunculaceae): Chloroplast DNA reveals two evolutionary lineages across central Europe and Scandinavia. J. Biogeogr. 35: 1650–1664.
Sang T., Crawford D. J., Stuessy T. F. 1995. Documentation of reticulate evolution in peonies (Paeonia) using internal transcribed spacer sequences of nuclear ribosomal DNA: implications for biogeography and concerted evolution. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92(15): 6813–6817.
Soltis P. S., Soltis D. E. 2009. The role of hybridization in plant speciation. Annu. Rev. Plant Biol. 60: 561–588.
Sopova M., Sekovski Z. 1982. Chromosome atlas of some Macedonian angiosperms. III. God. Zborn. Biol. Fak. Univ. Kiril Metod. 35: 145–161.
Sramkó G., Laczkó L., Volkova P. A., Bateman R. M., Mlinarec J. 2019. Evolutionary history of the Pasque-flowers (Pulsatilla, Ranunculaceae): Molecular phylogenetics, systematics and rDNA evolution. Mol. Phylogenet. Evol. 135: 45–61. DOI: 10.1016/j.ympev.2019.02.015
Sun Y.-L., Park W.-G., Oh H.-K., Hong S.-K. 2014. Genetic diversity and hybridization of Pulsatilla tongkangensis based on the nrDNA ITS region sequence. Biologia 69: 24–31. DOI: 10.2478/s11756-013-0284-1
Szczecińska M., Łazarski G., Bilska K., Sawicki J. 2017. The complete plastid genome and nuclear genome markers provide molecular evidence for the hybrid origin of Pulsatilla × hackelii Pohl. Turk. J. Bot. 41(4): 329–337. DOI: 10.3906/bot-1610-28
Szczecińska M., Sawicki J. 2015. Genomic resources of three Pulsatilla species reveal evolutionary hotspots, species-specific sites and variable plastid structure in the family Ranunculaceae. Int. J. Mol. Sci. 16: 22258–22279.
Szczecińska M., Sramkó G., Wołosz K., Sawicki J. 2016. Genetic diversity and population structure of the rare and endangered plant species Pulsatilla patens (L.) Mill. in East Central Europe. PLoS ONE 11(3): e0151730. DOI: 10.1371/journal.pone.0151730
Цвелёв Н. Н. Pulsatilla L. // Флора Восточной Европы. Т. 10. СПб.: Мир и семья, 2001. С. 85–94.
Uotila P. 1980. Pulsatilla patens x vernalis Suomessa. Memoranda Soc. Fauna Fl. Fenn. 56: 111–117.
Valuyskikh O. E., Teteryuk L. V., Pylina Y. I., Sushentsov O. E., Martynenko N. A., Shadrin D. M. 2020. Phylogenetic relationships and status of taxa of Pulsatilla uralensis and P. patens s. str. (Ranunculaceae) in north-eastern European Russia. PhytoKeys 162: 113–130. DOI: 10.3897/phytokeys.162.53361
White T. J., Bruns T., Lee S., Taylor J. 1990. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: M. A. Innis, D. H. Gelfand, J. I. Sninsky, T. J. White (eds.). PCR Protocols: Guide to Methods and Applications. San Diego: Academic Press. Pp. 315–322.
Winterfeld G., Schneider J., Röser M. 2009. Allopolyploid origin of Mediterranean species in Helictotrichon (Poaceae) and its consequences for karyotype repatterning and homogenisation of rDNA repeat units. Syst. Biodivers. 7(3): 277–295.
Как цитировать
Пунина Е. О., Михайлова Ю. В., Шнеер В. С., Крапивская Е. Е., Мачс† Э. М., Родионов А. В. Внутригеномный полиморфизм внутренних транскрибируемых спейсеров 35S рДНК (ITS) у трёх видов и трёх межвидовых гибридов Pulsatilla (Ranunculaceae) // Turczaninowia, 1. Т. 27, № 4. С. 67–85 DOI: 10.14258/turczaninowia.27.4.8. URL: http://turczaninowia.asu.ru/article/view/16626.
Раздел
Научные статьи