Kлональное микроразмножение Chrysanthemum leiophyllum (Asteraceae)

  • E. V. Kuritskaya Ботанический сад-институт ДВО РАН Email: akvilegia-praim@mail.ru
  • A. I. Nedoluzhko Ботанический сад-институт ДВО РАН Email: akvilegia-praim@mail.ru
  • E. V. Vrzhosek Ботанический сад-институт ДВО РАН Email: akvilegia-praim@mail.ru
  • E. V. Boltenkov Ботанический сад-институт ДВО РАН Email: akvilegia-praim@mail.ru

Аннотация

Восточноазиатский вид Chrysanthemum leiophyllum является источником адаптивных признаков в селекции Ch. × morifolium. Исследовали особенности введения в культуру in vitro и клонального микроразмножения Chrysanthemum leiophyllum. В качестве эксплантов использовали части побега с пазушными почками. Разработан способ стерилизации побегов, который обеспечивает получение жизнеспособных эксплантов. При культивировании на среде Мурасиге-Скуга (MC), дополненной 0,5 мг/л 6-бензиламинопурина (БАП) и 30 г/л сахарозы, формировались укороченные и витрифицированные побеги, в базальной части которых развивалась каллусная ткань. Уменьшение содержания БАП до 0,2 мг/л способствовало росту побегов. Снижение концентрации сахарозы в два раза приводило к увеличению коэффициента размножения Ch. leiophyllum до 10,3, а при снижении концентрации макросолей коэффициент размножения достигал 11,7. Оптимальной для размножения побегов является среда с половинным содержанием макросолей в сочетании с 0,2 мг/л БАП. Интенсивное развитие корней отмечено на MC-среде с половинным содержанием макросолей в присутствии 0,5 мг/л индолилуксусной кислоты (ИУК) и 30 г/л сахарозы. На развитие корней в большей степени влияли регуляторы роста, оптимальным регулятором роста на стадии укоренения является ИУК. Эффективность адаптации растений к почвенным условиям составила 98 %. Полученные in vitro растения нормально развивались, к концу первого года в открытом грунте образовали приземные розетки листьев, а на второй год вступили в генеративную фазу. Число хромосом у полученных in vitro растений соответствовало материнскому растению 2n = 36.

Ключевые слова: Chrysanthemum leiophyllum, культура in vitro, органогенез, регуляторы роста, число хромосом.

Скачивания

Данные скачивания пока недоступны.

Metrics

Загрузка метрик ...

Литература

Abramova L. I. 1988. Opredelenie chisla hromosom i opisanie ih morfologii v meristeme i v zernah kul’turnyh rastenij: Metodicheskie ukazanija [Determination of chromosome number and description of their morphology in the meristem and grains of cultivated plants: Guidelines]. Leningrad, 62 p. [In Russian]. (Абрамова Л. И. Определение числа хромосом и описание их морфологии в меристеме и в зернах культурных растений: Методические указания. Л.: ВИР, 1988. 62 с.).

Bush S. R., Earle E. D, Langhans R. W. 1976. Plantlets from petal segments, petal epidermis, and shoot tips of the periclinal chimera, Chrysanthemum morifolium ‘Indianapolis’. Amer. J. Bot. 63(6): 729–737. DOI: 10.2307/2442032

Chakrabarty D., Mandal A. K. A., Datta S. K. 1999. Management of chimera through direct shoot regeneration from florets of chrysanthemum (Chrysanthemum morifolium Ramat.). J. Hort. Sci. Biotechnol. 74(3): 293–296. DOI: 10.1080/14620316.1999.11511111

Chakrabarty D., Mandal A. K. A., Datta S. K. 2000. SEM and light microscopic studies on direct shoot regeneration from ray florets of Chrysanthemum. Israel J. Plant Sci. 48(2): 105–107. DOI: 10.1560/B6WM-2565-2BVY-P3W9

Hill G. P. 1968. Shoot formation in tissue cultures of Chrysanthemum ‘Bronze Pride’. Physiol. Plant. 21(2): 386–389. DOI: 10.1111/j.1399-3054.1968.tb07262.x

Karim M. Z., Amin M. N., Azad M. A. K., Begum F., Rahman M. M., Ahmad S., Alam R. 2003. In vitro shoot multiplication of Chrysanthemum morifolium as affected by sucrose, agar and pH. Biotechnology 2(2): 115–120. DOI: 10.3923/biotech.2003.115.120

Karp A. 1995. Somaclonal variation as a tool for crop improvement. Euphytica 85(1): 295–302. DOI 10.1007/ BF00023959

Kaul V., Miller R. M., Hutchinson J. F., Richards D. 1990. Shoot regeneration from stem and leaf explants of Dendranthema grandiflora Tzvelev (syn. Chrysanthemum morifolium Ramat.). Plant Cell Tissue Organ Cult. 21(1): 21–30. DOI: 10.1007/BF00034487

Khalid N., Davey M. R., Power J. B. 1989. An assessment of somaclonal variation in Chrysanthemum morifolium: the generation of plants of potential commercial value. Sci. Hort. 38(3–4): 287–294. DOI: 10.1016/0304-4238(89)90076-9

Lee S. M., Lee C. H., Kim K. S. 2004. Multiplication of Dendranthema zawadskii ssp. latilobum var. leiophyllum through multiple shoot induction from rhizome-derived shoot tip culture. J. Korean Soc. Hort. Sci. 45(1): 43–48.

Lu C. Y, Nugent G., Wardley T. 1990. Efficient, direct plant regeneration from stem segments of chrysanthemum (Chrysanthemum morifolium Ramat. cv. Royal Purple). Plant Cell Rep. 8(12): 733–736. DOI: 10.1007/BF00272106.

Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15(3): 473–497. DOI: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x

Nedoluzhko A. I. 2010. Prospects of using wild relatives in breeding of Chrysanthemum hortorum. Sibirskiy Vestnik Selskokhozyaystvennoy Nauki 11: 43–50 [In Russian]. (Недолужко А. И. Перспективы использования диких родичей в адаптивной селекции хризантемы садовой // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки, 2010. № 11. С. 43–50).

Rout G. R, Mohapatra A., Jain S. M. 2006. Tissue culture of ornamental pot plants: a critical review on present scenario and future prospects. Biotechnol. Adv. 24(6): 531–560. DOI: 10.1016/j.biotechadv.2006.05.001

Stewart R. N., Dermen Н. 1970. Somatic genetic analysis of the apical layers of chimeral sports in Chrysanthmum by experimental production of adventitious shoots. Amer. J. Bot. 57(9): 1061–1071. DOI: 10.2307/2441272.

Опубликован
2016-06-21
Как цитировать
Kuritskaya E. V., Nedoluzhko A. I., Vrzhosek E. V., Boltenkov E. V. Kлональное микроразмножение Chrysanthemum leiophyllum (Asteraceae) // Turczaninowia, 2016. Т. 19, № 2. С. 99-104. URL: http://turczaninowia.asu.ru/article/view/1380.
Раздел
Научные статьи